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His-Tag 蛋白純化磁珠

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產(chǎn)品簡(jiǎn)介
產(chǎn)地 國(guó)產(chǎn) 級(jí)別 其他

磁珠純化組氨酸標(biāo)簽蛋白,無(wú)需對(duì)樣品進(jìn)行多次長(zhǎng)時(shí)間的高速離心和濾膜過(guò)濾、無(wú)需控制流速、更無(wú)需高昂
的層析設(shè)備。樣品與磁珠的特異性結(jié)合、洗滌以及目標(biāo)蛋白的洗脫變得簡(jiǎn)單、快速、易操作。對(duì)于熟練的操作者而
言,在 1h 內(nèi)就能獲得高純度的目標(biāo)蛋白,且能輕松實(shí)現(xiàn)高通量和大規(guī)模樣品的平行處理,為研究者節(jié)省了時(shí)間和
成本。

詳細(xì)介紹

1、緩沖液的準(zhǔn)備
目標(biāo)蛋白與組氨酸標(biāo)簽蛋白純化磁珠的結(jié)合性能將直接影響目標(biāo)蛋白的純化效率,而各種緩沖液配制也將在一
定程度上影響目標(biāo)蛋白的回收率和純度。因此,在較大規(guī)模蛋白純化之前,用戶應(yīng)該自行設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn),篩選出適合純
化目標(biāo)蛋白的緩沖液體系,主要包括 Binding Buffer、 WashingBuffer、 ElutionBuffer。
增加咪唑濃度進(jìn)行洗脫是組氨酸標(biāo)簽純化磁珠常用的洗脫方法,使用時(shí),在不確定洗脫咪 唑濃
度情況下,推薦在緩沖液中分別加入 10 mM、 20 mM、 50 mM、 100 mM、 200mM、 300mM、 400 mM、 500 mM
咪唑,濃度從低到高分別洗脫,磁吸后收集蛋白上清液,之后通過(guò) SDS-PAGE 電泳等方法鑒定洗脫結(jié)果。
以下提供的緩沖液體系適用于多數(shù)組氨酸標(biāo)簽蛋白的純化,供用戶參考。 Binding Buffer: 20 mM 磷酸緩沖液,
0~50 mM 咪唑, pH7.4 ; WashingBuffer: 20 mM 磷酸緩沖液, 50~100 mM 咪唑, pH7.4; Elution Buffer: 20mM
磷酸緩沖液, 100-500 mM 咪唑, pH7.4;
2、 磁珠預(yù)處理
預(yù)估蛋白表達(dá)量, 根據(jù) 30-40μg/mg 蛋白的結(jié)合量投入合適量的磁珠, 假如預(yù)估表達(dá)量為 10-20mg, 那么需要投入
500mg 的磁珠;
利用磁鐵或者磁力架去除磁珠保存液, 加入保存液相同體積的 Bingding Buffer 清洗 3 次, 每次上下翻轉(zhuǎn) 10-20 次,
去除上清液; 建議磁性分離時(shí)間為 30-60s。
3、 目標(biāo)蛋白與磁珠的結(jié)合
加入目標(biāo)蛋白樣品(建議目標(biāo)粗蛋白溶液與 Binding Buffer 相同, 如過(guò)不同, 建議使用超濾或者透析的方式進(jìn)行 Buffer
替換), 震蕩混勻 30s, 室溫或者冷藏旋轉(zhuǎn)混勻 10-30 分鐘(如果目標(biāo)蛋白溫度穩(wěn)定性差, 可在冷藏條件下進(jìn)行, 適
當(dāng)增加結(jié)合時(shí)間至 1-2 個(gè)小時(shí))。
4、 磁珠洗滌
加入合適體積的 Washing Buffer(建議體積為 1-2mL/100mg) , 顛倒混勻數(shù)次, 磁性分離, 去除上清, 重復(fù)操作 3-
5 次直至沒(méi)有雜蛋白出現(xiàn)(建議使用分光光度計(jì) OD280 進(jìn)行質(zhì)量控制);
5、 目標(biāo)蛋白洗脫
用戶可根據(jù)需要改變洗脫體積調(diào)整目標(biāo)蛋白濃度,加入合適體積的 Elution Buffer,輕輕翻轉(zhuǎn)離心管數(shù)次,使磁珠懸
浮,磁性分離,收集洗脫液到新的離心管中,即為純化的目標(biāo)蛋白樣品; 如果需要,可以重復(fù)上述步驟 1 次,收集

樣品到新的離心管中,以檢測(cè)目標(biāo)蛋白是否洗脫*。
6、 磁珠后處理
(1)在裝有磁珠的離心管中加入 2mL/100mg 的 500mM 咪唑,上下翻轉(zhuǎn)離心管數(shù)次,使磁珠懸浮,磁性分離,去
除上清液。
(2)重復(fù)上述步驟 2 次。
(3)在離心管中加入 2mL/100mg 的 ddH2O,上下翻轉(zhuǎn)離心管數(shù)次,使磁珠懸浮,磁性分離,去除上清液。
(4)重復(fù)上述步驟 2 次。
(5)加入 Storage Buffer 到磁珠中使總體積為 1 mL/100mg,保存于 2~30℃(長(zhǎng)期保存,置于 2~8℃),可用于
下一次同種蛋白的純化。
7、 磁珠再生
磁珠連續(xù)使用三次以上,其結(jié)合目標(biāo)蛋白的能力可能會(huì)明顯降低,建議進(jìn)行磁珠再生處理。
Stripping Buffer: 20 mM 磷酸緩沖液, 500 mM NaCl, 100 mM EDTA, pH7.4
Beads Washing Buffer(可選): 0.5 M NaOH, 2 M NaCl
Recharge Buffer: 100 mM NiSO4(該化學(xué)試劑有一定的毒性,可能造成過(guò)敏反應(yīng),使用時(shí)務(wù)必注意)
Storage Buffer: 20%(v/v)乙醇
以 5 mL (500mg) 磁珠懸液為例,詳細(xì)說(shuō)明磁珠再生操作:
(1)將磁珠懸液進(jìn)行磁性分離,去除上清液,從磁性分離器上取下離心管,在離心管中加入 5mLddH2O, 上下翻
轉(zhuǎn)離心管數(shù)次,使磁珠重新懸浮,磁性分離,去除上清液。(2)加入 5 mL Stripping Buffer,上下翻轉(zhuǎn)離心管數(shù)次,
使磁珠重新懸浮,室溫旋轉(zhuǎn)混合 5min,磁性分離,去除上清液。重復(fù)此步驟 1 次。
(3)加入 5 mL ddH2O,上下翻轉(zhuǎn)離心管數(shù)次,使磁珠重新懸浮,磁性分離,去除上清液,重復(fù)此步驟 2 次。
(4)堿處理: 加入 5 mL Beads Washing Buffer,上下翻轉(zhuǎn)離心管數(shù)次,使磁珠重新懸浮,室溫旋轉(zhuǎn)混合 5 min,
磁性分離,去除上清液。加入 5 mL ddH2O,上下翻轉(zhuǎn)離心管數(shù)次,使磁珠重新懸浮,磁性分離,去除上清液。重
復(fù) ddH2O 洗滌步驟 3~5 次,至洗滌液呈中性為止。(5)加入 5 mL Recharge Buffer,上下翻轉(zhuǎn)離心管數(shù)次,使
磁珠重新懸浮,室溫旋轉(zhuǎn)混合 20min,磁性分離,去除上清液。
(6)加入 5 mL ddH2O,上下翻轉(zhuǎn)離心管數(shù)次,使磁珠重新懸浮,磁性分離,去除上清液。重復(fù)此步驟 6 次以上,
保證鎳離子去除*。
(7)加入 Storage Buffer 到磁珠中使總體積為 5 mL,保存于 2~30℃(長(zhǎng)期保存,置于 2~8℃)。

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