詳細介紹
四通道動態(tài)LED陣列近紅外光譜儀
DUAL-KLAS-NIR
同步測量PSII活性(葉綠素?zé)晒猓?/span>和PSI活性(P700)
PC(質(zhì)體藍素)Fd(鐵氧還蛋白)的氧化還原變化
2016年2月Photosynthesis Research雜志發(fā)表了Schreiber博士團隊研究文章Deconvolution of ferredoxin, plastocyanin, and P700 transmittance changes in intact leaves with a new type of kinetic LED array spectrophotometer,隆重介紹了設(shè)計的DUAL-KLAS-NIR四通道動態(tài)LED陣列近紅外光譜儀。之后2016年4月,2017年3月Schreiber博士團隊再次發(fā)表文章,進一步闡述DUAL-KLAS-NIR的實際應(yīng)用。
作為PSI的電子供體和電子受體,PC(質(zhì)體藍素)和Fd(鐵氧還蛋白)對PSI的氧化還原起著至關(guān)重要的調(diào)控作用。但一直缺乏科學(xué)便捷的手段對其運轉(zhuǎn)狀態(tài)進行檢測。集成以DUALl-PAM-100為標(biāo)志的第二代PAM的基本功能,采用*的去卷積技術(shù)(一種根據(jù)來源不同對信號進行分離的技術(shù)),WALZ公司推出了可以測量PC和Fd氧化還原狀態(tài)的新一代PAM熒光儀—DUAL-KLAS-NIR四通道動態(tài)LED陣列近紅外光譜儀。
DUAL-KLAS-NIR不但集成了Dual-PAM-100的基本功能,可以同時測量PSP和PSI,而且能夠測量4組不同波段(780-820nm,820-870nm,840-965nm,870-965nm)的信號,實現(xiàn)對P700(PSI反應(yīng)中心)、PC和Fd的氧化還原狀態(tài)分別測量。另外,它還可以測量由540nm和460nm光化光激發(fā)的葉綠素?zé)晒?。利用DUAL-KLAS-NIR四通道動態(tài)LED陣列近紅外光譜儀,可以準(zhǔn)同步地測量各種不同的信號,不僅在馳豫動力下,還可持續(xù)地在自然穩(wěn)態(tài)下同時獲取各組分的信息。
突出特點
? 可測量活體葉片或懸浮液,對P700、PC和Fd分別進行連續(xù)的實時的去卷積分析。
? 同時測量分別由540nm(整個葉片)和460nm(表層細胞層)波段激發(fā)的兩種葉綠素?zé)晒狻?/span>
? 通過集成發(fā)光二極管技術(shù),高度緊湊的固態(tài)照明系統(tǒng),提供635nm,460nm的光化光和740nm波段遠紅光,以及635nm單周轉(zhuǎn)和多周轉(zhuǎn)飽和閃光。
? 擁有和DUAL-PAM-100相似的光學(xué)部件幾何結(jié)構(gòu),可與3010-DUAL兼容,結(jié)合GFS-3000光合儀,在可控條件(光照,溫度,濕度,CO2濃度)下,同步測量氣體交換和電子傳遞相關(guān)的氧化還原。
? 測量光頻率范圍廣(1 - 400 kHz),允許連續(xù)評估Fo,可以在高時間分辨率下記錄快速動態(tài)瞬變(如多相熒光上升動力學(xué)或脈沖弛豫動力學(xué))。
主要功能
? 測定質(zhì)體藍素(PC),PS I反應(yīng)中心(P700)和鐵氧還蛋白(Fd)的氧化還原變化。
? 通過應(yīng)用創(chuàng)新的分析方法獲得PC,P700和Fd光譜特征。在線監(jiān)測P700,PC和Fd的氧化還原變化,并確定PC / P700和Fd / P700的比值。
? 可以通過綠色或藍色PAM測量光來激發(fā)熒光。綠光比藍光更深入到葉子中。因此,綠色激發(fā)的熒光包括來自更深葉層的信息,因此非常適合與整個葉子的NIR吸收測量進行對比分析。
? 專業(yè)數(shù)據(jù)記錄軟件,入門特別簡單??墒褂肈UAL-KLAS-NIR軟件的自動測量程序?qū)嶒?,也可以編輯腳本(Script)或者保存手動測量程序(Trigger),輕松執(zhí)行復(fù)雜的測量協(xié)議。可自定義測量動作用于特殊誘導(dǎo)過程動力學(xué)曲線數(shù)據(jù)獲取和分析。
? 兼具慢速動力學(xué)曲線(飽和脈沖分析、誘導(dǎo)曲線和光響應(yīng)曲線)和快速動力學(xué)曲線(飽和脈沖動力學(xué)曲線、高達30µs分辨率的馳豫動力學(xué)曲線)。
DUAL-KLAS-NIR軟件近紅外測量光設(shè)置 | 同步測量Fluo, P700, PC, Fd慢速誘導(dǎo)動力學(xué)曲線 |
應(yīng)用領(lǐng)域
光合作用電子傳遞過程各復(fù)合體的氧化還原狀態(tài)深入剖析,類囊體膜蛋白組分功能研究。
可廣泛應(yīng)用于光合合成生物學(xué)研究相關(guān)的植物學(xué),植物生理學(xué),分子生物學(xué),農(nóng)學(xué),林學(xué)的領(lǐng)域。
應(yīng)用案例
DUAL-KLAS-NIR為光合作用開辟了一個全新的研究領(lǐng)域,實時顯示P700,PC和Fd在活體材料中的氧化還原狀態(tài),在線解卷積氧化還原信號。實現(xiàn)PS I及其供體側(cè)和受體側(cè)氧化還原動力學(xué)的同步測量,從而了解它們圍繞光系統(tǒng)I的復(fù)雜相互作用,另外還可以探究PS I周圍的循環(huán)電子傳遞的信息。
在DUAL-KLAS-NIR出現(xiàn)之前,測量光系統(tǒng)I的有效量子產(chǎn)量,P700信號總是會摻雜Fd的貢獻和PC的變量。上圖中圖C顯示了不同光強梯度下甘藍型油菜葉片PSI的有效PSI量子產(chǎn)量Y(I),PSII的有效量子產(chǎn)量Y(II)和經(jīng)PSI熒光修正后的PSII的有效量子產(chǎn)率Y(II)corr。經(jīng)過修正后,Y(II)corr和Y(I)在低光強下相似(小于500μmol m-2 s-1)。然而,當(dāng)光強大于500μmol m-2 s-1時,Y(I)明顯高于Y(II),Y(I)/Y(II)可達1.45.
光系統(tǒng)I的有效天線尺寸測量。植物樣品從在黑暗條件轉(zhuǎn)移到光下時,在PSI附近,首先PC被氧化,開始積累,之后才是P700被氧化。單純的PC信號變化的初始斜率可以用作PS I的有效天線尺寸的度量。
右圖是放大后的PC(紅色)和P700(藍色)初始吸光度變化,顯示了他們初始斜率的巨大差異。對于黑暗適應(yīng)的葉子,轉(zhuǎn)到光下的短時間內(nèi),光系統(tǒng)I受體側(cè)未活化,F(xiàn)d還原的初始斜率也也說明了這一點。 |
DUAL-KLAS-NIR軟件設(shè)有一個窗口顯示P700和PC氧化還原狀態(tài)的相對變化。該功能可以用來計算PC和P700之間的表觀平衡常數(shù)。這對研究P700與其供體側(cè)的相互關(guān)系是非常重要的。 |
對暗適應(yīng)的葉子施加飽和脈沖,測量Fd氧化還原動力學(xué)。我們不難發(fā)現(xiàn),飽和脈沖產(chǎn)生的電子將Fd還原,飽和脈沖之后的黑暗中,F(xiàn)d被緩慢再氧化。之后,PSI的受體側(cè)的電子流被激活,再氧化動力學(xué)變得更快。在激活PSI的受體側(cè)之后,可以通過監(jiān)測脈沖后Fd再氧化的速率來研究Fd的暗滅活。這些動力學(xué)變化可以通過指數(shù)擬合程序擬合。圖A給出了Fd再氧化動力學(xué)曲線指數(shù)擬合程序擬合的實例,圖B顯示了常春藤葉片不同暗適應(yīng)時間后的PSI受體側(cè)的暗滅活動力學(xué)差異。
PC,P700和Fd的NIR透射率變化與這些復(fù)合物的在樣品中的含量成比例,并且PC,P700和Fd的消光系數(shù)的比率是恒定的。這可以用于探究不同物種或不同生長條件下(例如陽生/陰生,脅迫/非脅迫)樣品的PC / P700和Fd / P700比率,以及PC和Fd庫的相對大小?,F(xiàn)已觀察到高PC / P700比率與高電子傳遞速率(ETR)值相關(guān)。上圖顯示,在常春藤陽生和陰生葉片中,相對于P700,它們PC和Fd含量有著顯著的不同。
主要測量參數(shù):
? 葉綠素?zé)晒鉁y量:Fo, Fm, Fm’, F, Fo’, Fv/Fm, Y(II), qP, qL, qN, NPQ, Y(NO), Y(NPQ) , ETR(II)等參數(shù),以及各種熒光動力學(xué)曲線。
? P700測量:必須能夠測量Pm, Pm’, Y(I), ETR(I), Y(ND)和Y(NA)等參數(shù),以及各種P700動力學(xué)曲線。
? PC測量:PCm, PCm’, PCox, Rel PCox
? Fd測量:Fdm, Fdm’, Fdred, Rel Fdred, Fd/PC
? 實時顯示數(shù)據(jù)采集,可以連續(xù)顯示數(shù)據(jù)采集過程即完整的動力學(xué)曲線過程
? 軟件程序:慢速動力學(xué)曲線,快速動動力學(xué)曲線,曲線擬合
產(chǎn)地:德國WALZ
代表文獻
數(shù)據(jù)來源:光合作用文獻Endnote數(shù)據(jù)庫
原始數(shù)據(jù)來源:Google Scholar
1. Shimakawa, G. and C. J. P. D. Miyake (2018). "Changing frequency of fluctuating light reveals the molecular mechanism for P700 oxidation in plant leaves." 2(7): e00073. [Dual-KLAS-NIR應(yīng)用]
2. Takagi, D. and C. J. P. p. Miyake (2018). "Proton gradient regulation 5 supports linear electron flow to oxidize photosystem I." [Dual-KLAS-NIR應(yīng)用]
3. Nikkanen, L., et al. (2018). "Multilevel regulation of non‐photochemical quenching and state transitions by chloroplast NADPH‐dependent thioredoxin reductase." Physiologia plantarum. [Dual-KLAS-NIR應(yīng)用]
4. Nikkanen, L., et al. (2018). "Regulation of cyclic electron flow by chloroplast NADPH‐dependent thioredoxin system." Plant Direct 2(11): e00093. [Dual-KLAS-NIR應(yīng)用]
5. Vaseghi, M.-J., et al. (2018). "The chloroplast 2-cysteine peroxiredoxin functions as thioredoxin oxidase in redox regulation of chloroplast metabolism." eLife 7: e38194. [Dual-KLAS-NIR應(yīng)用]
6. Lima-Melo, Y., et al. (2018). "Consequences of photosystem I damage and repair on photosynthesis and carbon utilisation in Arabidopsis thaliana." Plant J. [Dual-KLAS-NIR應(yīng)用]
7. Kumar, V., et al. (2018). "Interference between arsenic-induced toxicity and hypoxia." 0(0). [Dual-KLAS-NIR應(yīng)用]
8. Schreiber, U. (2017). "Redox changes of ferredoxin, P700, and plastocyanin measured simultaneously in intact leaves." Photosynthesis Research: 1-18. [Dual-KLAS-NIR應(yīng)用]
9. Schreiber, U. and C. Klughammer (2016). "Analysis of Photosystem I Donor and Acceptor Sides with a New Type of Online-Deconvoluting Kinetic LED-Array Spectrophotometer." Plant and Cell Physiology: pcw044. [Dual-KLAS-NIR應(yīng)用]
10. Klughammer, C. and U. Schreiber (2016). "Deconvolution of ferredoxin, plastocyanin, and P700 transmittance changes in intact leaves with a new type of kinetic LED array spectrophotometer." Photosynthesis Research.[Dual-KLAS-NIR原理]