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公司動(dòng)態(tài)

ELISA實(shí)驗(yàn)步驟的影響因素

閱讀:479發(fā)布時(shí)間:2017-11-30

一、ELISA的影響因素

 

1.  固相載體

可溶性抗原或抗體吸附于固相載體而成為不溶形式,這是進(jìn)行酶標(biāo)記測(cè)定的基本條件。許多物質(zhì)可作為固相載體,如纖維素、交聯(lián)右旋糖苷、瓊脂糖珠、聚丙烯、聚苯乙烯、聚乙烯及聚氯乙烯等等。但在ELISA中zui常用的是聚苯乙烯或聚氯乙烯微量反應(yīng)板及塑料管。

由于微量反應(yīng)板所用試劑量少,操作方便,適合于大規(guī)模應(yīng)用。國(guó)產(chǎn)聚苯乙烯微量反應(yīng)板(上海塑料三廠出品)目前已大量應(yīng)用于ELISA測(cè)定,并且獲得了滿意的結(jié)果。但每批微量反應(yīng)板對(duì)抗原或抗體蛋白質(zhì)的吸附性能是有顯著差別的。實(shí)驗(yàn)證明,吸附效果似乎與塑料的類型及其表面性質(zhì)有關(guān)。特別是塑料制品在加工過(guò)程中因工藝不同或受其他因素的影響而造成吸附性能的*差異,甚至*喪失吸附能力。

因此,對(duì)每批制品在使用前,必須經(jīng)過(guò)實(shí)驗(yàn)室鑒定,鑒定的方法和標(biāo)準(zhǔn)是對(duì)每批購(gòu)置的微量反應(yīng)板或塑料管抽樣,用0.2 ug/ml純化的正常人IgG進(jìn)行包被,經(jīng)洗滌后加酶標(biāo)記抗人球蛋白進(jìn)行反應(yīng),再經(jīng)孵育洗滌,加底物顯色終止反應(yīng)后,逐孔在酶標(biāo)比色計(jì)中測(cè)定其消光值、光密度(OD值)。一般認(rèn)為全板中每?jī)煽组gOD值的誤差不超過(guò)10%為合格。如果中間孔與四周孔OD值相差太大,或者反應(yīng)板的這一邊與另一邊凹孔的OD值相差大,均不合格。此外,還要檢查陽(yáng)性和陰性參考血清OD值是否有明顯差別。一般要求有10倍左右的差異為合格,微量反應(yīng)板或塑料管在使用前并不一定通過(guò)特殊處理。用蒸餾水沖洗即可應(yīng)用。

 

2.  抗原

在ELISA中,包被于固相載體表面的抗原或抗體的來(lái)源和制備方法對(duì)試驗(yàn)結(jié)果都有影響。包被所用的抗原必須是可溶性的,而且要求是和穩(wěn)定的制劑,純度和免疫原性要高。如果不純,由于抗原中所含雜質(zhì)就會(huì)競(jìng)爭(zhēng)固相載體上的有限位置,降低敏感性和特異性。此外還應(yīng)考慮到制備包被抗原不應(yīng)破壞其免疫學(xué)活性。

經(jīng)試驗(yàn)證明,適用于其他血清學(xué)試驗(yàn)的抗原并非均適合用于ELISA法。因此,對(duì)某一疾病的診斷,必須通過(guò)實(shí)踐,才能選出適用的抗原。對(duì)大多數(shù)傳染病和寄生蟲病的血清學(xué)診斷中所用的抗原并非要求十分嚴(yán)格,一般能用于補(bǔ)體結(jié)合試驗(yàn)的可溶性抗原均可用于ELISA,例如超聲波抗原、凍融抗原、細(xì)菌的外膜抗原、脂多糖(LPS)、細(xì)菌的外毒素以及用表面活性劑(如SDS)所提取的抗原等,在作ELISA時(shí),必須要有1-2種試劑、要求純化,但用表面活性劑提取的抗原在包被前必須透析除去表面活性劑,否則就不易吸附到固相載體上去。

此外,對(duì)某些抗原必須進(jìn)行提純,如病毒的組織培養(yǎng)和雞胚培養(yǎng)物以及病毒接種動(dòng)物的臟器等,它們當(dāng)中存在著許多非抗原的蛋白質(zhì),必須設(shè)法除去,常用梯度超速離心或親和層析法提純,不經(jīng)提純是不能使用的。在用特異性抗體包被固相載體時(shí)也要提純。用抗原或抗體蛋白包被固相載體時(shí)選擇的濃度要適當(dāng)。如濃度太高,則低效價(jià)抗體可能測(cè)不出來(lái),或包被過(guò)量形成多層抗原吸附,故在操作過(guò)程中可能脫落從而降低敏感性和可重復(fù)性。

用zui適稀釋度抗原,包被固相載體不僅經(jīng)濟(jì),而且可以克服前帶現(xiàn)象。那么用多大濃度抗原進(jìn)行包被zui為合適呢?可通過(guò)棋盤滴定法進(jìn)行測(cè)定,但用單項(xiàng)滴定法更為簡(jiǎn)便,其方法是將抗原進(jìn)行一系列稀釋包被微量反應(yīng)板,再用一定稀釋度的陽(yáng)性參考血清和陰性參考血清進(jìn)行孵育后洗滌,再加酶結(jié)合物進(jìn)行反應(yīng),經(jīng)孵育洗滌后,加底物溶液顯色,終止反應(yīng)后分別測(cè)定OD值,選擇OD值≥1.0的那個(gè)抗原稀釋度為zui適包被濃度。一般總是要選擇那個(gè)OD值稍大于1.0,而不選擇小于1.0的抗原濃度。陰性參考血清OD值要求<0.1-0.2。也就是要求陽(yáng)性參考血清和陰性參考血清的OD值有明顯差別。

抗原包被固相載體除濃度外,對(duì)時(shí)間、溫度、PH均有關(guān)系。溫度高(如37℃、45℃、或56℃),包被時(shí)間可縮短,溫度低可延長(zhǎng)包被時(shí)間。但為了方便起見,通常采用4℃包被過(guò)夜,可使抗原吸附得更加*且均勻。在用聚苯乙烯或聚乙烯微量反應(yīng)板或塑料管作固相載體時(shí),在堿性條件下(如0.1 mol/L、PH9.6碳酸鹽緩沖液稀釋抗原)4℃包被過(guò)夜較為合適。但在某些試驗(yàn)中,如用LPS或毒素蛋白包被時(shí),用PH 7.2-7.4 PBS稀釋才是滿意的。包被特異蛋白質(zhì)的濃度為1-10 ug/ml,而對(duì)某些病原微生物抗原以5-20 ug/ml較為合適,但均應(yīng)通過(guò)滴定。


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